一、儀器、試劑
    儀器：細胞培養瓶，移液槍，槍頭盒（5ml、1ml、100μl、10μl），移液管（5ml、10ml），玻璃分裝瓶（100ml、200ml、500ml），高壓鋁盒（離心管、凍存管），離心機（800轉5min），倒置顯微鏡，細胞計數板，水浴箱（37℃）， CO₂培養箱（調整**37℃、5%CO₂）。
試劑：DMEM，Serum，Trypsin，P.S.，Puromycin，DMSO。
二、試劑配制
10ml Complete Media：DMEM 9ml；
                    Serum 1ml；
                    P.s. 100μl.
10ml Frozen Media：Complete Media 8ml；
                  Serum 1ml；
                  DMSO 1ml。
Puromycin(2μg/μl)：6μlPromycin/4ml CM
三、具體操作
1. 準備：取各種已消毒的培養用品（槍頭盒、高壓鋁盒、分裝瓶）置于凈化臺面，紫外線消毒30分鐘，Media、Trypsin、Serum、P.S.、Puromycin從4℃冷藏拿出**室溫待用（使用之前用75%酒精全面消毒）。開始工作前先洗手、戴上乳膠手套，用75%酒精噴拭手**肘部。
    紫外滅菌時間到后，將燈和風機打開，開始工作。將Media、Trypsin、Serum、P.S.、Puromycin去除封口處密封條，用75%酒精噴拭全面消毒后拿進去待用（注意：使用之前，應充分搖勻）。合理擺放所需物品，盡量減少手部的大幅度擺動，點燃酒精燈，配置100ml Complete Media：用10ml移液管吸取DMEM 10ml*9次**分裝瓶中，再吸取Serum 10ml**分裝瓶中，再加入1ml P.S.用移液管吹打混勻后待用。
2. 辛 將待處理細胞取出后，倒掉原有的培養基；
   安裝5ml移液槍頭后吸取PBS 5ml，每支細胞加入2.5ml，清洗細胞代謝物和培養瓶底部（清洗不干凈會使胰酶消化變難），清洗過后倒掉PBS（垂直傾斜瓶各倒一次，一定要倒干凈，防止殘余PBS稀釋Trypsin，影響酶解效果）。
   然后，每支細胞加入0.5ml Trypsin，搖擺培養瓶使其充分覆蓋瓶底，待每一支培養瓶都加入Trypsin搖勻后，再從**支開始，用力拍打培養瓶，左右搖擺使細胞都被消化下來，不在貼壁，依次拍打各支細胞，觀察，使其全部都消化完全（注意：控制消化時間不要太久，把握不好就要再顯微鏡下觀察）。然后再加入3倍體積的Media 1.5ml于培養瓶中，終止其消化。再確保槍頭無污染的前提下，同一種細胞可以用同一個槍頭來吹打細胞（仔細吹打培養瓶，尤其是邊邊角角），使其成為單細胞懸液。
3. 提前用鑷子準備出4ml離心管，對應每一支細胞，做好標記。再細胞吹打完全后，用移液槍將細胞懸液轉移**離心管中，用密封條封好口。待所有細胞都轉移**離心管后，①將待凍存的細胞放置于準備好的碎冰中保存待用（合理放置防止染菌）；②將用于分瓶傳代的細胞先800轉離心5min（離心過程中，每一支培養瓶中加入3.5ml Media）后取出，去除封口膜，用酒精噴拭后（確保密封），打開瓶蓋后燒瓶口滅菌，小心倒掉上清后燒瓶口滅菌，然后加入1ml或1.5ml Media吹打均勻（注意：不要產生大量氣泡）后，對應各自的培養瓶，均勻的進行一分二或一分三傳代，搖晃均勻，觀察后，放入CO₂培養箱中繼續培養。
4. 將①等待凍存的細胞懸液，進行800轉離心5min。在此期間，配制凍存液ep:10ml，可在用完的serum15ml離心管中，加入8ml Media，1ml serum，1ml DMSO，吹打混勻后待用；然后用鑷子取出對應的n支凍存管，做好標記（名稱、日期、作者姓名shou字母縮寫）。
離心結束后，取出離心管，去除封口膜，用酒精噴拭后（確保密封），打開瓶蓋后燒瓶口滅菌，小心倒掉上清后，燒瓶口滅菌，然后加入2ml配好的凍存液，吹打均勻后，進行1分2的凍存，待所有細胞處理完全后，先**于-20℃中等待，然后轉移**-80℃冰箱中保存，并做好凍存記錄。
注意事項:  
1、嚴格無菌操作，打開/擰上瓶蓋時一定要燒瓶口滅菌。
2.凡是帶入超凈工作臺內的酒精、PBS、培養基、胰蛋白酶的瓶子均要用75％酒精擦拭瓶子的外表面，并靠近酒精燈火焰操作。
3.器皿使用前必須過火滅菌。
4.繼續使用的器皿（如瓶蓋、滴管）要放在高處，使用時仍要過火。
5.各種操作要靠近酒精燈，動作要輕、準確，不能亂碰。如吸管不能碰到廢液缸。
6.吸取兩種以上的使用液時要注意更換吸管，防止交叉污染。
 
四、細胞的凍存（補充）
1.先將凍存管放入4℃冰箱，約40min。
2.接著置于-20℃冰箱，約30-60min。
3.置于-80超低溫冰箱（可保存半年）中放置過夜。
4.置于液氮罐中長期保存。
5同時做好凍存記錄，在自己的筆記本和凍存記錄本上均要記錄。
6.不宜將凍存細胞放置在0℃～-60℃這一溫度范圍內過久，低溫損傷主要發生在這一溫度區內，是“危險溫區”。
補充1：              細胞復蘇的原則
快速融化：必須將凍存在-196℃液氮中的細胞快速融化**37℃，使細胞外凍存時的冰晶迅速融化，避免冰晶緩慢融化時進入細胞形成再結晶，對細胞造成損害。#p#分頁標題#e#
具體操作
一. 實驗前準備：
1.將水浴鍋預熱**37℃。
2.大 紫外線照射30min的超凈工作臺臺面。
3.在超凈工作臺中按次序擺放好消過毒的離心管、槍頭盒、培養瓶等。
二．取出凍存管：
1.根據細胞凍存記錄按標簽找到所需細胞的編號。
2.從液氮罐中取出細胞盒，取出所需的細胞，同時核對管外的編號。
三．迅速解凍：
1.迅速將凍存管投入到（注意：管口在液面以上避免染菌）已經預熱的水浴鍋中迅速解凍，并要不斷的搖動，使管中的液體迅速融化。
2.彪 約1-2min后凍存管內液體完全溶解，再配平放入離心機中800r/min 離心5min后，取出后去除封口膜并用酒精噴拭凍存管的外壁和管口，用酒精燈燒瓶口后，小心吸棄凍存液，加入1ml Media，吹打制成細胞懸液，將細胞懸液分裝入培養瓶內，加Media**4ml后，將培養瓶放入37℃和5%CO2的培養箱內培養，換液的時間由細胞情況而定。

補充2：               細胞計數 
實驗原理：當待測細胞懸液中細胞均勻分布時，通過測定一定體積懸液中的細胞的數目，即可換算出每毫升細胞懸液中細胞的細胞數目。
具體操作：
一.準備工作：
取一瓶傳代的細胞，按照《傳代細胞培養（消化法）》中的傳代方法繁殖細胞，待長成單層后以被使用。
二.細胞懸液制備：
細胞懸液的制備方法是用PBS液洗滌、0.25％的胰蛋白酶液消化后，加入培養液，吹打制成待測細胞懸液。
三.細胞計數：
1.蓋好蓋玻片：取一套血球計數板，將特制的蓋玻片蓋在血球計數槽上。
2.cc 制備計數用的細胞懸液：用吸管吸5滴細胞懸液到一離心管中，加入5滴臺盼藍染液（0.4％）或苯胺黑，活細胞不會被染色，加入染液后就可以在顯微鏡下區別活細胞和死細胞。
3.將細胞懸液滴入計數板：將待測細胞懸液吹均勻，然后吸取少量懸液沿蓋片邊緣緩緩滴入，要保證蓋片下充滿懸液，注意蓋片下不要有氣泡，也不能讓懸液流入旁邊槽中。
4.統計四個大格的細胞數：將血球計數板放于顯微鏡的低倍鏡下觀察，并移動計數板，當看到鏡中出現計數方格后，數出四角的四個大格（每個大格含有16個中鉻）中沒有被染液染上色的細胞數目。
5.計算原細胞懸液的細胞數:按照下面公式計算細胞密度：
（細胞懸液的細胞數）/ml＝（ 四個大格子細胞數/4) ×2×10⁴ 
說明：公式中除以4因為計數了4個大格的細胞數。
公式中乘以2因為細胞懸液于染液是1：1稀釋。
公式中乘以10⁴因為計數板中每一個大格的體積為：
1.0mm（長）×1.0mm（寬）×0.1mm（高）＝0.1mm3 而 1ml＝1000mm3
四.細胞計數要點：
1.進行細胞計數時，要求懸液中細胞數目不低于104個/ml，如果細胞數目很少要進行離心再懸浮于少量培養液中；
2.要求細胞懸液中的細胞分散良好，否則影響計數準確性。
3.取樣計數前，應充分混勻細胞懸液，尤其時多次取樣計數時更要注意每次取樣都要混勻，以求計數準確；
4. 數細胞的原則是只數完整的細胞，若細胞聚集成團時，只按照一個細胞計算。如果細胞壓在格線上時，則只計上線，不計下線，只計右線，不計左線。
5. 操作時，注意蓋片下不能有氣泡，也不能讓懸液流入旁邊槽中，否則要重新計數。
五.初學者易犯的錯誤：
1. 計數前未將待測懸液吹打均勻。
2. 滴入細胞懸液時蓋玻片下出現氣泡。
3. 滴入懸液時的量太多，**使細胞懸液流入旁邊的槽中。